。 　　在SDA的临床应用方面，Down等和Ichiyama等人进行了一些有益的探索。Down等采用化学发光的方法对294例临床收集的痰标本进行了TBIS6110的检验，并根据校正曲线换算成相应的结核杆菌数目[12]。他们得出的初步结论是SDA可用于临床标本的结核杆菌检测。Ichiyama等人做了SDA与PCR和培养法检测结核杆功物临床对比实验[13]在用SDA、PCR和培养法对299位病人的530例痰标本进行结核杆菌检验的实验中，以细菌培养法作参考，SDA灵敏度为94.7%，PCR的灵敏度为89.5%，PCR的特异性为100%。Ichiyama等据此认为，在临床上检测痰标本中的结核杆菌方面，SDA应当是一种很有用的方法。 　　4 SDA的不足 　　一是SDA产物不均一。由于在SDA循环中总要产生一些不同的单、双链产物，这使得用电泳法检测SDA扩增产物时必然要出现拖尾现象。尽管有不少学者试图通过调节钙、镁离子浓度以及酶的用量来改善[7]，但由于这是SDA的必然产物，目前的技术不可能根本消除。二是SDA产物的两端必然带有所用核酸内切酶的识别序列或其残端，因而SDA产物不可能直接用于克隆。这使得SDA在基因工程方面没有优势。三是目前SDA产物的检测手段尚不够如意。目前SDA产物检测的主导方法是荧光偏振检测法。但该检测方法需要特殊仪器——荧光分光光度计，这限制了SDA在临床的广泛应用。另外，SDA可能因标本中含有不明抑制物，使检测不能反映标本中靶DNA的真实含量。复合DNA中高含量靶DNA对低含量靶DNA的竟争抑制现象也很常见。 　　5 SDA的应用前景 　　如前所述，对SDA检测技术的研究已有取得可喜的成绩。嗜热SDA的建立并与FP结合，使高灵敏度、快速特异的SDA检测成为现实。最近，Mehrpouyan等人用SDA检测HIV-1 rNA获得成功[14]，这说明SDA可用于所有核酸的检测。总之，虽然SDA尚有不如人意的地方，但随着其不断迅速发展，可以相信，SDA将成为临床疾病的诊治和科学研究的有用手段。 参考文献 　　1 Walker GT,Fraiser MS,Schram JL,et al.Nucleic Acids res,1992;20(7):1691-6 　　2 Walker GT,Nadeau JG,Spears PA,et al.Nucleic Acids res,1994;22(13):2670-7 　　3 Walker GT,Nadeau JG,Linn CP,et al.Clin Chem,1996;42(1):9-13 　　4 Walker GT,Nadeau JG amd Linn CP.Mol cell-Probes,1995;9(6)399-403 　　5 Walter NG.J Mol Biol,1995;254(5):856-68 　　6 Little MC,Sears PA and Shank DD.Mol Cell probes,1994;8(5)375-84 　　7 Zwadyk P Jr,Down JA,Myers N,et al.J Clin microbiol,1994;32(9)2140-6 　　8 Walker GT,Linn CP and Nadeau JG.Nucleic Acids res,1996;24(2)348-53 　　9 Walkdr GT and Linn CP.Clin Chem,1996;42(10):1604-8 　　10 Spears PA,Linn CP,Woodard DL,et al.Anal biochem,1997;247(1):130-7 　　11 Spargo CA,Fraiser MS,Van Cleve M,et al.Mol Cell probes,1996;10(4):247-56 　　12 Down JA,O’Connell MA,Dey MS,et al.J Clin microbiol,1996;34(4)860-5 　　13 Ichiyama S,Ito Y,Sugiura F,et al.J Clin microbiol,1997;35(12):3082-5 　　14 Mehrpouyan M,Bishop JE,Ostrerova N,et al.Mol Cell probes,1997;11(5):337-47

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